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细胞代传和冻存的操作与注意事项
2018-03-28    来源:ZSCI公众号

1.细胞代传具体操作

 传代前准备: 

1. 预热培养用液:把已经配制好的装有培养液、PBS液和胰蛋白酶的瓶子放入37℃水浴锅内预热。

2. 用75%酒精擦拭经过紫外线照射的超净工作台和双手。 

3. 正确摆放使用的器械:保证足够的操作空间,不仅便于操作而且可减少污染。 

4. 点燃酒精灯:注意火焰不能太小。 


▼ 细胞传代:

1. 取出预热好的培养用液:取出已经预热好的培养用液,用酒精棉球擦拭好后方能放入超净台内。

2. 从培养箱内取出细胞:注意培养瓶取出细胞时要旋紧瓶盖,用酒精棉球擦拭显微镜的台面,再在镜下观察细胞。

3. 将培养瓶放入超净工作台后打开瓶口,同时要在酒精灯上烧口消毒。

4. 加入消化液:小心吸出旧培养液,用PBS清洗(冲洗),加入适量消化液(胰蛋白酶液),注意消化液的量以盖住细胞最好,最佳消化温度是37℃。

5. 显微镜下观察细胞:倒置显微镜下观察消化细胞,若胞质回缩,细胞之间不再连接成片,表明此时细胞消化适度。 

6. 弃去胰蛋白酶液,加入新鲜的培养液终止反应。小心吹打成细胞悬液。

7. 将细胞悬液吸入10 ml离心管中。平衡后将离心管放入离心机中,以1000 rpm/min离心5 min。 

8. 弃去上清液,加入适当体积的培养液,用滴管轻轻吹打细胞制成细胞悬液。

9. 将细胞悬液吸出分装至2-3个培养瓶中,加入适量培养基旋紧瓶盖。

10. 显微镜下观察细胞:倒置显微镜下观察细胞量,必要时计数。注意密度过小会影响传代细胞的生长,传代细胞的密度应该不低于5×105/ml。最后要做好标记。 

11. 继续培养:用酒精棉球擦拭培养瓶,适当旋松瓶盖,放入CO2培养箱中继续培养。传代细胞2-4 h后开始贴附在瓶壁上。

注意事项: 

1.严格的无菌操作 

2.适度消化:消化的时间受消化液的种类、配制时间、加入培养瓶中的量等诸多因素的影响,消化过程中应该注意培养细胞形态的变化,一旦胞质回缩,连接变松散,或有成片浮起的迹象就要立即终止消化。



2.细胞冻存具体操作

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 冻存前准备

1. 准备适量冻存管,做好标记后置于4℃冰箱预冷;

2. 配制冻存液,一般为用培养液配制10% DMSO;

3. 梯度冻存盒。


 细胞冻存:

1.  按照细胞传代步骤1-7操作制备细胞悬液并离心;

2. 弃去上清,加入适当体积的冻存液,用滴管轻轻吹打细胞制成细胞悬液;

3. 将1 ml细胞悬液加入加入之前已做好标记的冻存管中并做好记录;

4. 将冻存管放入梯度冻存盒然后保存至-80℃过夜(如果没有冻存盒,可以先在4℃冰箱放置30 min,然后转移至-20℃放置1-2 h,最后转移至-80℃过夜),第二天取出放入液氮罐,并记录好位置信息。


注意事项:

 1. 使用DMSO前,不需要进行高压灭菌,它本身就有灭菌的作用。高压灭菌反而会破华它的分子结构,以至于降低冷冻保护效果。在常温下,DMSO对人体有害,故在配制时最好戴上手套操作。 

2. 不宜将冻存细胞放置在0℃~-60℃这一温度范围内过久,低温损伤主要发生在这一温度区内,是“危险温区”。 

3. 注意定期检查液氮罐内液氮量,及时添加。


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